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度也较低。DC功能较差者治疗前毫无反应,两组治疗前HBsAg、HBeAg和HBV DNA浓度无差异。提示DC活化程度可作为判断免疫治疗预后的指标。 Shimizu等[9]研究发现,DC免疫可以打破HBVTg对CTL的免疫耐受,而且转基因鼠不能产生抗HBs只与与DC功能缺陷有关,与T、B细胞功能无关。经IFN处理后DC可上调表达MHC和T细胞抗原(KLM)。国内外学者已有报道慢性乙型肝炎患者外周血DC功能明显低下,抗原呈递不足可能是导致HBV感染慢性化的原因之一[10,11]。 (二) DC在HCV发病机制中的作用目前研究认为,细胞免疫可识别和清除病毒感染,因而HCV的清除起重要作用。HCV感染早期T细胞反应的强度、表位特异性和细胞因子分泌情况等很可能将决定感染的预后。HCV感染时,除病毒感染的非造血细胞外,淋巴结和骨髓来源的DC作为专职抗原提呈细胞也直接参与启动抗病毒T细胞应答[18]。 AuffermannGretzinger等[12]研究发现,慢性丙型肝炎患者外周血DC经同源刺激后不能分化成熟,其膜表面分子仍为未成熟型,虽能摄取抗原,但不能呈递抗原。自限性HCV感染者DC功能跟正常人一样可以分化成熟,提示DC抗原呈递能力下降可能是导致持续感染慢性化的原因之一。 Bain等[13]报道FCV感染者外周血DC虽然形态及摄取抗原能力正常,但刺激T细胞增殖能力较正常人明显降低。用RTPCR检测DC培养液中HCV病毒及其准种,6例中5例可检测到HCV RNA阳性。其中 1例DC中HCV RNA序列不同于血清、肝脏及其他部位,提示HCV引起的DC刺激能力下降可能由于DC本身储存病毒所致。 Kakumu等[14]观察HCV和HBV引起的原发性肝癌(HCC)中DC分泌IL12以及T细胞刺激能力下降。21例HCV、5例HBV所致的HCC均可见DC功能下降。Kanto等[11]发现HCV感染所致的DC功能下降可被HCV核心区抗原刺激后恢复。24例慢性丙型肝炎患者DC刺激前CD86、IFNγ表达以及T细胞刺激能力均低于正常组DC,但核心区抗原刺激后DC可持续T细胞增殖能力。 四、DC疫苗的制备及其在HBV/HCV抗感染免疫中的作用 (一) 病毒特异性抗原负载的DC疫苗为增加DC的抗原呈递功能,将病高特异性的抗原负载到DC细胞或体外致敏DC制成特异性DC疫苗或瘤纸在抗肿瘤免疫中已取得较好效果。用同样的方法治疗肝炎也取得相似结果。 Bohn等[15]将HBsAg致敏的DC转入H2小鼠体内,可诱导MHC限制的HBsAg特异性CTL反应。Bocher等[16]等用BALB/C小鼠全身致死性照射后植入SCID小鼠骨髓以支持快速植入PBMC制成可感染HBV或HCV的动物模型。用上述模型来研究和比较3种治疗性抗乙型肝炎疫苗:①抗原HBcAg负荷的DC疫苗;②大剂量HBcAg抗原;③编码HBcAg的DNA疫苗。实验发现,3种疫苗均诱发了强烈的针对HBc的原发性Th细胞反应,但后两种疫苗诱发了针对特异抗原靶位HBc(1827)的特异性CTL反应和特异性体液免疫反应,提示大剂量HBcAg抗原颗粒和编码HBcAg的DNA疫苗可能是更有前提的治疗性疫苗。 (二) 特异性抗原基因导入DC的方法由于基因转染的DC疫苗能提供更多更有效的可供识别的抗原表位,而且可以最终克服HLA限制,已成为最具发展前景,备受人们关注的研究热点。目前在基因转染DC的方法上人们已经进行了许多探索。 1.DNA转染DC虽然裸DNA转染DC的效率较低,但仍然有几个研究小组在不断探索。Tuting等[17]采用基因枪轰击的方法将编码HPV16E7的质粒导入鼠骨髓来源的DC,将存活的转基因DC免疫小鼠后,不仅在体内产生抗原特异性的CTL反应,而且还引起随后对致死量HPV16转化的肿瘤细胞攻击的排斥。采用电击法和脂质体介导的方法将pEGFP质粒分别导入CD34+来源的DC(PCDC)、郎汉斯细胞(PCLC)和CD34来源的DC(MoDC)。实验结果表明,脂质体介导法对3种DC几乎无效,而电击法的转染效率分别为12%PCDC,16%PCLC和2%MoDC。 2.重组腺病毒介导的转染近年来的研究表明,重组腺病毒介导的转染效率比裸DNA转染DC的效率高。Wan等[18]研究显示,90%的鼠骨髓来源的DC能有效转染Ad(γgal),但Dietz等[19]研究发现,直接用AdRSVGFP转染人外周血DC,只有大约20%的DC表达GFP,采用AdRSVGFP和脂质体后,转染效率可高达90%,说明脂质体可以增强腺病毒介导的基因转染DC的效率。使用腺病毒载体作为基因转移载体来制备疫苗,遇到的主要问题是病毒本身基因的表达成为潜在的免疫原,但动物实验表明,反复注射病毒转染的DC,仅仅产生低滴度的中和抗体。Mulders等[20]利用适度的紫外线照射重组腺病毒,既不改变腺病毒结合受体的结构和进入细胞的能力,又能封闭腺病毒本身基因的转录,随后用Poly(Llysine)共价结合紫外线照射得到的腺病毒,结果高效地将外源基因转入DC,且没有共存的腺病毒基因的表达,这为DC疫苗的制备提供了一种更加安全的方法。 3.逆转录病毒介导的基因转染腺病毒作为基因转移载体的主要限制是不能将被转移的外源基因整合到转染细胞的基因组中去,这样1~4周后,外源基因将失去表达,逆转录病毒却能将被转移的外源基因整合到转染细胞的基因组中去,从而外源基因将得到有效和稳定的表达。目前,一些实验已证明,利用逆转录病毒将TSA基因导人鼠和人的DC是可行的。如用MFG逆转录病毒系统将LacZ基因转入人外周血DC,7d后,35%~67%的DC显示出较高的βgal活性,20d后PCR依然能检测出LacZ基因的存在,表明LacZ基因已稳定整合于DC基因组中。另外,逆转录病毒转染的DC依旧保持着DC的生物学特性,并能诱导产生抗原特异的CTL。 4.重组痘病毒介导的基因转染DC重组痘病毒介导TSA基因转染DC具有如下特点:转染率高;TSA基因高表达;TSA基因进入DC后基因表达快;免疫接种前,转染的DC所需培养时间短。重组痘病毒转染的DC也能产生抗原特异性CTL。Kim等[21]发现重组痘病毒介导的黑色素瘤相关抗原基因MART1转染DC后,接种于黑色素瘤患者,结果在体内产生MART1特异性的CTL反应,显示出重组痘病毒在制备DC疫苗上的巨大潜力。 (三) DNA疫苗直接转染DC尽管DNA疫苗仅能直接转染较少一部分的DC,但是实验已发现在引流淋巴结的DC被广泛激活,从而为效应细胞的活化提供了最佳的条件,因此DNA疫苗若以DC为载体,能得到良好的免疫效果。 五、问题与展望 树突状细胞系统作为机体内免疫反应的始动手和调节子,具有激活CD8+ CTL CD4+T辅助细胞的能力,控制着体内免疫反应的过程,因而它已成为抗肿瘤和抗病毒免疫反应的中心环节。近年来,有关DC系统及其抗肿瘤疫苗的实验研究取得了显著的进展,促进了DC疫苗在部分肿瘤病人体内的Ⅰ,Ⅱ期临床研究的深入,但是在抗病毒免疫方面尤其是抗肝炎病毒的免疫治疗方面尚处于开始阶段。随着DC研究的深入,体外获得大量的DC和制备DC上一页 [1] [2] [3] 下一页
疫苗的技术日趋成熟,特别是可以针对每个患者制备特异的DC疫苗,从而进行特定的免疫学治疗。相信上述DC疫苗在不久的将来可能成为病毒性肝炎临床治疗的一种不可缺的辅助手段。上一页 [1] [2] [3]





